【保存条件】
-20ºC保存,有效期1年
【概述】
NP-40 裂解液是一种非变性、性质温和的去污剂基裂解液,主要利用 1% 的 NP-40 破坏细胞膜。
核心优势:与 RIPA 等强力裂解液相比,NP-40 不破坏蛋白质的三级结构和分子间相互作用。
适用场景:极适合用于需要维持蛋白活性的实验,如免疫沉淀 (IP)、免疫共沉淀 (Co-IP)、酶活性分析及 ELISA 等。同时也兼容常规的SDS-PAGE和Western Blot。
样本兼容:广泛适用于动植物细胞/组织。配合溶菌酶或破壁酶后,亦可用于细菌和真菌样本。
【操作方法】
1. 准备工作
融解:裂解液可在室温或37°C快速融解,一旦融解必须立即置于冰上备用。
抑制剂添加:临用前,根据实验需求加入蛋白酶抑制剂(如 ES-8135)或磷酸酶抑制剂(如ES-8136)。
2. 培养细胞处理
1) 贴壁细胞:
① 吸除培养液,用冰冷 PBS 洗涤一次。按 6 孔板每孔加入 150–250 μL 裂解液(参考下表)。
② 移液器吹打数次,确保裂解液覆盖所有细胞,冰上孵育 2–10 分钟(植物细胞宜延长至 5–15 分钟)。
2) 悬浮细胞/微生物:
① 收集:离心收集细胞,弹击管底以分散细胞。
动物悬浮细胞:1,000–15,00×g离心5 分钟。细菌/酵母:4,000–6,000×g离心5分钟。弃上清,轻轻弹击管底使沉淀松动。
细菌/酵母建议先用溶菌酶或破壁酶(Lyticase)消化处理,以获得更高回收率。
② 清洗与裂解:用冰冷PBS洗涤一次,再次离心沉淀,弃尽残液,按比例加入含抑制剂的NP-40裂解液,冰上裂解5-10分钟。
3) 收集:10,000–14,000×g,4°C离心3–5分钟,取上清蛋白,推荐使用 BCA 法 (EK-5001) 测定蛋白浓度。
3. 组织样品处理
① 预处理:将组织剪切成细小碎片。
② 比例:按照每 20 mg 组织加入 150–250 μL 裂解液的比例加入(含抑制剂)。
③ 破碎:使用玻璃匀浆器或组织研磨仪彻底粉碎(或采用液氮研磨法)。若组织极其微小,也可直接加入裂解液后强烈涡旋。冰上孵育10–15分钟。
④ 离心:10,000–14,000×g,4°C离心3–5分钟,取上清蛋白,推荐使用 BCA 法 (EK-5001) 测定蛋白浓度。
【附表:不同培养器皿的裂解液参考用量】
为了达到最佳的裂解效果(通常蛋白浓度在2-4 mg/mL),细胞长满(100%汇合度)时建议参考下表进行加液:
培养器皿类型 | 培养面积(cm2) | 细胞数量(个) | 裂解液建议用量(μL) |
6 孔板 (每孔) | 9.5 | 1×106 | 150-250 |
3.5cm培养皿 | 8 | 1×106 | 150-250 |
6cm培养皿 | 21 | 2.5×106 | 500 |
10cm培养皿 | 55 | 7×106 | 1000 |
T25 培养瓶 | 25 | 3×106 | 500-600 |
【注意事项】
1. 全程冰上:蛋白降解酶在常温下活性剧增,所有裂解步骤必须在冰上或4℃进行。
2. 基因组DNA干扰:若裂解后粘度过大,提示基因组DNA释放。可适当延长离心时间或进行短暂的超声破碎处理(Ice bath, 20% power, 3–5 seconds)。
3. 蛋白浓度:动物细胞:100 万细胞约得2-4 mg/mL蛋白。组织样本:20 mg鼠肝约得15–25 mg/mL蛋白。
4. 安全防护:仅限于科研使用。操作时请佩戴实验服及一次性手套。