ES-8140 NP-40细胞裂解液

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【保存条件】

-20ºC保存,有效期1年


概述

NP-40 裂解液是一种非变性、性质温和的去污剂基裂解液,主要利用 1% 的 NP-40 破坏细胞膜。

核心优势:与 RIPA 等强力裂解液相比,NP-40 不破坏蛋白质的三级结构和分子间相互作用。

适用场景:极适合用于需要维持蛋白活性的实验,如免疫沉淀 (IP)、免疫共沉淀 (Co-IP)、酶活性分析及 ELISA 等。同时也兼容常规的SDS-PAGE和Western Blot。

样本兼容:广泛适用于动植物细胞/组织。配合溶菌酶或破壁酶后,亦可用于细菌和真菌样本。


【操作方法】

1. 准备工作
融解:裂解液可在室温或37°C快速融解,一旦融解必须立即置于冰上备用。
抑制剂添加:临用前,根据实验需求加入蛋白酶抑制剂(如 ES-8135)或磷酸酶抑制剂(如ES-8136)。

2. 培养细胞处理

1) 贴壁细胞:

① 吸除培养液,用冰冷 PBS 洗涤一次。按 6 孔板每孔加入 150–250 μL 裂解液(参考下表)。

② 移液器吹打数次,确保裂解液覆盖所有细胞,冰上孵育 2–10 分钟(植物细胞宜延长至 5–15 分钟)。

2) 悬浮细胞/微生物:

① 收集:离心收集细胞,弹击管底以分散细胞。

动物悬浮细胞:1,000–15,00×g离心5 分钟。细菌/酵母:4,000–6,000×g离心5分钟。弃上清,轻轻弹击管底使沉淀松动。

细菌/酵母建议先用溶菌酶破壁酶(Lyticase)消化处理,以获得更高回收率。

② 清洗与裂解用冰冷PBS洗涤一次,再次离心沉淀,弃尽残液,按比例加入含抑制剂的NP-40裂解液,冰上裂解5-10分钟。

3) 收集:10,000–14,000×g,4°C离心3–5分钟,取上清蛋白,推荐使用 BCA 法 (EK-5001) 测定蛋白浓度。

3. 组织样品处理

① 预处理:将组织剪切成细小碎片。

② 比例:按照每 20 mg 组织加入 150–250 μL 裂解液的比例加入(含抑制剂)。

③ 破碎:使用玻璃匀浆器或组织研磨仪彻底粉碎(或采用液氮研磨法)。若组织极其微小,也可直接加入裂解液后强烈涡旋。冰上孵育10–15分钟。

④ 离心:10,000–14,000×g,4°C离心3–5分钟,取上清蛋白,推荐使用 BCA 法 (EK-5001) 测定蛋白浓度。

【附表:不同培养器皿的裂解液参考用量】

为了达到最佳的裂解效果(通常蛋白浓度在2-4 mg/mL),细胞长满(100%汇合度)时建议参考下表进行加液:

培养器皿类型

培养面积(cm2

细胞数量()

裂解液建议用量(μL

6 孔板 (每孔)

9.5

1×106

150-250

3.5cm培养皿

8

1×106

150-250

6cm培养皿

21

2.5×106

500

10cm培养皿

55

7×106

1000

T25 培养瓶

25

3×106

500-600


【注意事项】

1. 全程冰上:蛋白降解酶在常温下活性剧增,所有裂解步骤必须在冰上或4℃进行。

2. 基因组DNA干扰:若裂解后粘度过大,提示基因组DNA释放。可适当延长离心时间或进行短暂的超声破碎处理(Ice bath, 20% power, 3–5 seconds)。

3. 蛋白浓度:动物细胞:100 万细胞约得2-4 mg/mL蛋白。组织样本:20 mg鼠肝约得15–25 mg/mL蛋白。

4. 安全防护:仅限于科研使用。操作时请佩戴实验服及一次性手套。

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