ES-8152 2×SDS-PAGE双色蛋白上样缓冲液(DTT)

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ES-8152 2×SDS-PAGE双色蛋白上样缓冲液(DTT)
货号 (Catalog Number): ES-8152

产品描述

【保存条件】

-20℃保存,有效期12个月


【概述】

本产品为2倍浓缩的蛋白电泳专用上样缓冲液,含有高纯度SDS和强还原剂 DTT,旨在彻底消除蛋白质间的结构与电荷差异,保护蛋白质免受热降解,并维持电泳过程中的 pH 环境稳定。

 变性机制:

1. SDS (十二烷基硫酸钠):破坏蛋白二级、三级结构,使其带上高密度负电荷,消除电荷差异。
2. DTT (二硫苏糖醇):有效还原并断开蛋白质分子内及分子间的二硫键,实现亚单位的彻底分离。

 双色追踪系统:
1. 蓝色 (溴酚蓝, Bromophenol Blue):常规电泳指示前沿,用于追踪样品运行位置。 
2. 粉红色 (派洛宁 Y, Pyronin Y):具有更快的迁移特性,特别适用于监测 Western Blot 转膜过程中蛋白质向膜(NC/PVDF)的转移情况。


使用方法

1. 溶解:室温或37°C水浴解冻并充分混匀。

2. 混合:将样品与2×缓冲液按1:1 的比例混合(例如:10 μL蛋白样品加入10 μL缓冲液)。若样品浓度过高,可用ddH2O预稀释。

3. 变性:混合后,95-100°C 加热 5–10 分钟。

4. 离心:冷却至室温,以 10,000–14,000 rpm 离心 2–5 分钟,取上清液即可进行电泳。

【指示剂迁移参考】

凝胶浓度 (%)

溴酚蓝 (蓝色) 近似位置

派洛宁 Y (粉红色) 相对位置

8%

~30 kDa

迁移最快,位于前端

12%

~20 kDa

位于溴酚蓝下方

15%

~10 kDa

派洛宁Y迁移可能慢于溴酚蓝

注:在经典Tris-Glycine电泳体系(SDS-PAGE)中,两种染料的迁移位置随凝胶浓度的变化规律如上


【注意事项】

1. 溶解预警:-20°C下SDS可能会析出。使用前请务必确认溶液完全清亮。若有沉淀,可通过37°C水浴促溶并摇匀。

2. 颜色变化:受DTT及温度影响,冻存状态下溶液可能呈现深棕色,复温溶解后会恢复正常,不影响实验结果。

3. 上样量控制:加样量过多可能导致条带拖尾或跑样不齐;加样不足则可能导致信号微弱。

4. 示踪染料偏差:由于不同厂家生产的预制胶或配制缓冲液的离子强度差异,染料的绝对迁移位置可能存在±5 kDa的波动。

5. 操作规范:必须在通风处操作,穿实验服并戴一次性手套。

产品规格

货期
现货
规格
10ml

应用领域

本产品适用于ES-8152、上样及电泳、生物科研试剂、ECOTOP SCIENTIFIC等研究领域。ECOTOP SCIENTIFIC(广州亿涛生物科技有限公司)提供高品质生物科研试剂,服务科研院所与生物医药企业。

存储条件

-20℃保存

品牌: ECOTOP SCIENTIFIC

常见问题 (FAQ)

试剂如何保存?

2× 上样缓冲液:-20℃ 12个月(避免反复冻融);4℃ 短期保存 1 周内使用。室温短期可用但长期 DTT 缓慢氧化失活。

可以用于哪些下游应用?

应用:① SDS-PAGE 上样(最主要);② WB 样品制备;③ Coomassie / 银染前样品准备;④ 部分蛋白互作研究(变性 IP);⑤ 蛋白纯度检查。

加热温度的选择?

标准 95–100℃ 5 分钟 — 大多数蛋白;65℃ 10 分钟 — 膜蛋白(避免聚集);37℃ 30 分钟 — 部分疏水蛋白;不加热 — 极不稳定蛋白(如某些 IF 抗原)。

常见使用错误?

① 加热后未冷却就上样(破坏胶孔);② 加热温度过高(>100℃ 部分蛋白聚集);③ 加热时间过长(>10 分钟,敏感蛋白变性);④ 反复冻融(DTT 氧化失活);⑤ 比例错误(上样不准)。

不还原(非变性)样品如何处理?

如需保留二硫键 / 蛋白复合物 — 使用非还原版本(不含 DTT)。如配套 ES-8158 类 5× 非变性蛋白上样缓冲液(不含 SDS + DTT),适合 native PAGE 与 Blue-Native 应用。

2× vs. 其他浓度选择?

2× — 适合常规上样比例。2× 适合大体积样品(1:1 混合);4× / 6× 适合中等浓度样品;6× / 10× 适合极浓样品(节省加样孔体积)。本品 2× 是常用选择。

DTT vs. β-巯基乙醇(BME)?

DTT — 无臭、还原能力稍强、稳定;BME — 有刺激性气味、还原能力相当、价格略低。本品(DTT 版)操作更人性化,无需通风柜。

使用方法?

典型用法:① 蛋白样品 + 2× 上样缓冲液按 1:2 比例混合;② 95–100℃ 加热 5 分钟变性;③ 离心后上样到 SDS-PAGE 凝胶。

各组分作用?

组分作用:① Tris-HCl pH 6.8 — 维持电泳浓缩胶的 pH;② SDS — 蛋白变性 + 均一负电荷;③ DTT/BME — 还原蛋白二硫键;④ 溴酚蓝 — 染料前沿指示电泳进度;⑤ 甘油 — 增加密度让样品下沉到加样孔。

Laemmli 上样缓冲液的标准配方?

Laemmli 类 SDS-PAGE 上样缓冲液标准配方(2× 浓度):100 mM Tris-HCl pH 6.8 + 200 mM 还原剂(DTT)+ 4% SDS + 0.2% 溴酚蓝 + 20% 甘油。本品为 2× 浓度。

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【保存条件】

-20℃保存,有效期12个月


【概述】

本产品为2倍浓缩的蛋白电泳专用上样缓冲液,含有高纯度SDS和强还原剂 DTT,旨在彻底消除蛋白质间的结构与电荷差异,保护蛋白质免受热降解,并维持电泳过程中的 pH 环境稳定。

 变性机制:

1. SDS (十二烷基硫酸钠):破坏蛋白二级、三级结构,使其带上高密度负电荷,消除电荷差异。
2. DTT (二硫苏糖醇):有效还原并断开蛋白质分子内及分子间的二硫键,实现亚单位的彻底分离。

 双色追踪系统:
1. 蓝色 (溴酚蓝, Bromophenol Blue):常规电泳指示前沿,用于追踪样品运行位置。 
2. 粉红色 (派洛宁 Y, Pyronin Y):具有更快的迁移特性,特别适用于监测 Western Blot 转膜过程中蛋白质向膜(NC/PVDF)的转移情况。


使用方法

1. 溶解:室温或37°C水浴解冻并充分混匀。

2. 混合:将样品与2×缓冲液按1:1 的比例混合(例如:10 μL蛋白样品加入10 μL缓冲液)。若样品浓度过高,可用ddH2O预稀释。

3. 变性:混合后,95-100°C 加热 5–10 分钟。

4. 离心:冷却至室温,以 10,000–14,000 rpm 离心 2–5 分钟,取上清液即可进行电泳。

【指示剂迁移参考】

凝胶浓度 (%)

溴酚蓝 (蓝色) 近似位置

派洛宁 Y (粉红色) 相对位置

8%

~30 kDa

迁移最快,位于前端

12%

~20 kDa

位于溴酚蓝下方

15%

~10 kDa

派洛宁Y迁移可能慢于溴酚蓝

注:在经典Tris-Glycine电泳体系(SDS-PAGE)中,两种染料的迁移位置随凝胶浓度的变化规律如上


【注意事项】

1. 溶解预警:-20°C下SDS可能会析出。使用前请务必确认溶液完全清亮。若有沉淀,可通过37°C水浴促溶并摇匀。

2. 颜色变化:受DTT及温度影响,冻存状态下溶液可能呈现深棕色,复温溶解后会恢复正常,不影响实验结果。

3. 上样量控制:加样量过多可能导致条带拖尾或跑样不齐;加样不足则可能导致信号微弱。

4. 示踪染料偏差:由于不同厂家生产的预制胶或配制缓冲液的离子强度差异,染料的绝对迁移位置可能存在±5 kDa的波动。

5. 操作规范:必须在通风处操作,穿实验服并戴一次性手套。

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