EK-1316 FastPure miRNA提取试剂盒

售价:¥0
到手价:0
一键复制产品信息
货期
规格
数量
EK-1316 FastPure miRNA提取试剂盒
货号 (Catalog Number): EK-1316

产品描述

产品介绍

本试剂盒采用高效的RNAEx ZOL裂解技术结合硅胶膜吸附工艺,可从动物组织、细胞及细菌等样本中快速提取高质量的微小RNA(miRNA)。该系统通过相分离技术去除大部分基因组DNA和蛋白质,随后通过高浓度乙醇调节,使miRNA选择性结合于吸附柱上。纯化后的miRNA可直接用于Northern Blot、Real-Time PCR及测序等实验。


存储条件

室温干燥保存可至少稳定12个月。


需要额外准备的材料

1. 无水乙醇(96%-100%)

2. 无RNase酶的1.5mL离心管

3. 无RNase酶的吸头

4. 干净的手套

5. 高速离心机

6. 物理研磨设备


开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。

1. Buffer RWT作为浓缩液提供可能会形成沉淀,如果有沉淀出现请37℃加热溶解后室温使用。在第一次使用前加入2倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

2.  Buffer RPE作为浓缩液提供,在第一次使用前加入4倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

3. RNase-Free水中不含任何抑菌因子,室温放置或操作时可能会引入细菌或真菌污染,使用时尽量注意,推荐开瓶后分装保存以减少污染风险保证实验稳定性。

4.  RNA在RNAEx ZOL中短时不会被RNase降解。但提取后继续处理过程中应使用不含RNase的无酶离心管或玻璃器皿。


操作步骤:

1. 请根据样品种类进行以下步骤(1a为动物细胞,1b为动物组织

1a. 收集动物细胞:悬浮细胞可直接300×g离心5min并仔细吸除上清留沉淀待使用;单层贴壁细胞可通过直接裂解法(吸尽培养基留下贴壁细胞,进行步骤2裂解)或胰酶处理法(吸尽培养基留下贴壁细胞,用PBS清洗细胞,吸除PBS后使用含0.10%-0.25%胰酶的PBS使细胞脱落,加入含有血清的培养基使胰酶失活后转入1.5mL无酶离心管中300×g离心5min,吸除上清留沉淀待使用)

注意:收集细胞数量不要超过1×107,收集细胞时一定要将细胞培养基去除干净,否则会导致步骤2时细胞裂解不完全,影响RNA与吸附柱的结合,导致RNA的产量降低。

1b. 动物组织匀浆裂解处理:将10mg-30mg动物组织转移入1.5mL无酶离心管中并加入700μL RNAEx ZOL(动物组织量不要超过30mg),使用研磨杵或电动研磨机将动物组织彻底研磨匀浆。直接进行步骤3.

匀浆时间根据样本裂解难易程度决定,亦可匀浆后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。

2. 样品裂解:对于1a中使用直接裂解法的细胞应在培养皿或培养瓶中直接加入700μL RNAEx ZOL破碎细胞涡旋或吹匀混合。将裂解液移入无酶1.5mL离心管中。涡旋或移液器混合并确保没有细胞团块可见。

细胞沉淀不完全松动吹匀可能会导致裂解效率低下和miRNA产量降低。一般≤3×106个细胞若细胞量较大,可涡旋后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。若不能及时提取,裂解后溶液可至于-80℃储存3-6个月。

3. 含裂解物离心管置于室温静置5min.

该步骤促进核蛋白复合物的解离。

4. 向含裂解物离心管中加入140μL Solution CH, 用力摇动或涡旋15s。

彻底混合对于随后的相分离很重要。

5. 离心管置于室温静置2-3min.

6. 在4°C下以 12,000×g离心15min

离心后,样品分为3相:上层含有miRNA的无色水相;白色的相间和较低的红色有机相。上层水相的体积应约为 350μL。

7. 将上层水相转移到新的无酶1.5mL离心管中,加入约1.5倍体积(通常为525μL)无水乙醇,移液器吹打彻底混匀。不要离心,立即进行下一步骤。

加入乙醇后可能会形成沉淀,为正常现象,不会影响提取过程和结果。

8. 上一步骤混匀后的溶液700μL转移入RNA吸附柱中并套上2mL收集管,≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

吸附柱最大上柱量为700μL,若溶液过多可分多次上柱。后续操作若无特殊说明吸附柱均置于2mL收集管中。

9. 向吸附柱中加入700μL Buffer RWT(使用前请确认Buffer RWT是否按要求加入2倍体积无水乙醇, ≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

10. 向吸附柱中加入500μL Buffer RPE使用前请确认Buffer RPE是否按要求加入4倍体积无水乙醇,≥8000×g(≥10,000 rpm)离心30s,弃废液。

11. 重复步骤10一次。

12. 倒弃滤液,将吸附柱放入收集管中, 以最大转速(~13,400×g)离心3min干燥柱

13. 将吸附柱套入新的无酶1.5mL 离心管中,并置于无酶的环境中开盖静置5-10min至乙醇晾干。

若吸附柱中残留乙醇将会对纯化后的RNA的下游实验造成影响。

14. 向吸附柱膜正中央加入50-100μL RNase-Free Water,盖上盖子室温静置3-5 min置于离心机中 ≥12,000×g(≥13,000 rpm) 离心3min得到miRNA溶液。

RNA洗脱体积不应少于30μL,否则影响洗脱效率。洗脱后的RNA溶液应置于-80℃储存。

产品规格

货期
1-2天
规格
50T、100T

应用领域

本产品适用于EK-1316、RNA提取、生物科研试剂、ECOTOP SCIENTIFIC等研究领域。ECOTOP SCIENTIFIC(广州亿涛生物科技有限公司)提供高品质生物科研试剂,服务科研院所与生物医药企业。

存储条件

室温干燥保存

品牌: ECOTOP SCIENTIFIC

常见问题 (FAQ)

提取的 miRNA 应如何保存?

短期 -20℃(1 周内);长期 -80℃ 分装储存(每管单次用量 + 备份),避免反复冻融。重要样品建议双管 -80℃ 双备份。

与普通 RNA 试剂盒(EK-1300/1303)相比怎么选?

EK-1300/1303(普通柱法):保留 ≥200 nt RNA,丢失大部分小 RNA,但对常规 mRNA 表达分析足够;EK-1316(含小 RNA):同时保留大小 RNA。选择依据:① 仅做 mRNA 分析 → EK-1303(更经济、无苯酚)或 EK-1300(含 ZOL 工艺);② 同时分析 miRNA 与 mRNA → EK-1316;③ 仅做 miRNA → EK-1316(或专用 miRNA 流程)。

可以用于哪些下游应用?

纯化后的 miRNA 可直接用于 Northern Blot、Real-Time PCR 及测序等实验。扩展:① miRNA qRT-PCR(茎环法或 polyA 加尾法);② 小 RNA 测序 sRNA-seq(建议起始量 ≥500 ng 总 RNA);③ miRNA 微阵列(Affymetrix miRNA、Agilent miRNA 类芯片);④ miRNA 体外靶基因验证(双荧光素酶报告);⑤ piRNA / tRF 等其他 sRNA 研究。

A260/A280 与浓度测量需要注意什么?

含 miRNA 的总 RNA 在 NanoDrop 测量时 OD260/OD280 应 ≥1.8。注意:① 短链小 RNA(<25 nt)NanoDrop 测量灵敏度偏低,浓度 <10 ng/µL 时建议用 Qubit miRNA 检测;② 测量浓度对小 RNA 文库构建至关重要,建议同时用两种方法(NanoDrop 测总 RNA + Qubit 小 RNA 专用 kit 测 miRNA fraction);③ 同一 RNA 样品在水中测得的 OD260/OD280 可能比在 Tris pH 7.5 中偏低,但不代表 RNA 不纯。

分相步骤的关键?

① 加 140 µL Solution CH 涡旋 15 s;② 室温静置 2–3 min;③ 4℃ 12,000×g 离心 15 min;④ 上层无色水相约 350 µL;⑤ 加 1.5 倍体积(约 525 µL)无水乙醇 移液器吹打彻底混匀(不要离心,立即上柱)。

与 EK-1300(普通 RNAex ZOL 柱法)相比的关键差异?

关键差异在乙醇浓度:① EK-1300:水相加等体积无水乙醇(≈350 µL)后上柱,结合较短小 RNA 效率低;② EK-1316:水相加约 1.5 倍体积无水乙醇(≈525 µL)后上柱,乙醇浓度提高到 65–70%,让 18 nt 起的小 RNA 都能结合膜。关键漂洗:EK-1316 用 Buffer RWT 替代 Buffer RW1(Buffer RWT 第一次使用前加 2 倍体积乙醇,Buffer RW1 是 0.25 倍体积乙醇)。

典型得率?

总 RNA 得率:与 EK-1300 相当(培养细胞 1×10⁶ 约 5–15 µg;组织 30 mg 约 30–150 µg)。小 RNA 得率:占总 RNA 5–15%,即 0.3–2 µg miRNA / 1×10⁶ 细胞。具体 miRNA 含量受细胞类型影响(造血细胞、肌肉细胞 miRNA 占比偏高)。

适用哪些样品?

① 动物细胞(≤1×10⁷,加 700 µL RNAEx ZOL 裂解);② 动物组织(10–30 mg,加 700 µL RNAEx ZOL 研磨匀浆)。说明书提示:可从动物组织、细胞及细菌等样本中快速提取高质量的微小 RNA(miRNA)。不推荐:血清/血浆(请用 EK-1318 / EK-1320);外泌体源 miRNA(请用 EK-1322)。每个样品可同时获得总 RNA + 小 RNA。

本试剂盒针对小 RNA 有什么特殊设计?

普通 RNA 提取试剂盒的硅胶膜结合条件以保留 ≥200 nt RNA 为主,会丢失大部分小 RNA。本试剂盒采用「RNAEx ZOL 裂解 + Solution CH 助分相 + 1.5 倍体积乙醇调节结合条件 + Buffer RWT 漂洗 + Buffer RPE 漂洗」工艺,让 18 nt 起的小 RNA(miRNA、piRNA、siRNA、tRF 等)能与大 RNA 一同结合柱并保留。

产品详情
常见问题解答(9)
累计评论(0)
手机购买

产品介绍

本试剂盒采用高效的RNAEx ZOL裂解技术结合硅胶膜吸附工艺,可从动物组织、细胞及细菌等样本中快速提取高质量的微小RNA(miRNA)。该系统通过相分离技术去除大部分基因组DNA和蛋白质,随后通过高浓度乙醇调节,使miRNA选择性结合于吸附柱上。纯化后的miRNA可直接用于Northern Blot、Real-Time PCR及测序等实验。


存储条件

室温干燥保存可至少稳定12个月。


需要额外准备的材料

1. 无水乙醇(96%-100%)

2. 无RNase酶的1.5mL离心管

3. 无RNase酶的吸头

4. 干净的手套

5. 高速离心机

6. 物理研磨设备


开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。

1. Buffer RWT作为浓缩液提供可能会形成沉淀,如果有沉淀出现请37℃加热溶解后室温使用。在第一次使用前加入2倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

2.  Buffer RPE作为浓缩液提供,在第一次使用前加入4倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

3. RNase-Free水中不含任何抑菌因子,室温放置或操作时可能会引入细菌或真菌污染,使用时尽量注意,推荐开瓶后分装保存以减少污染风险保证实验稳定性。

4.  RNA在RNAEx ZOL中短时不会被RNase降解。但提取后继续处理过程中应使用不含RNase的无酶离心管或玻璃器皿。


操作步骤:

1. 请根据样品种类进行以下步骤(1a为动物细胞,1b为动物组织

1a. 收集动物细胞:悬浮细胞可直接300×g离心5min并仔细吸除上清留沉淀待使用;单层贴壁细胞可通过直接裂解法(吸尽培养基留下贴壁细胞,进行步骤2裂解)或胰酶处理法(吸尽培养基留下贴壁细胞,用PBS清洗细胞,吸除PBS后使用含0.10%-0.25%胰酶的PBS使细胞脱落,加入含有血清的培养基使胰酶失活后转入1.5mL无酶离心管中300×g离心5min,吸除上清留沉淀待使用)

注意:收集细胞数量不要超过1×107,收集细胞时一定要将细胞培养基去除干净,否则会导致步骤2时细胞裂解不完全,影响RNA与吸附柱的结合,导致RNA的产量降低。

1b. 动物组织匀浆裂解处理:将10mg-30mg动物组织转移入1.5mL无酶离心管中并加入700μL RNAEx ZOL(动物组织量不要超过30mg),使用研磨杵或电动研磨机将动物组织彻底研磨匀浆。直接进行步骤3.

匀浆时间根据样本裂解难易程度决定,亦可匀浆后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。

2. 样品裂解:对于1a中使用直接裂解法的细胞应在培养皿或培养瓶中直接加入700μL RNAEx ZOL破碎细胞涡旋或吹匀混合。将裂解液移入无酶1.5mL离心管中。涡旋或移液器混合并确保没有细胞团块可见。

细胞沉淀不完全松动吹匀可能会导致裂解效率低下和miRNA产量降低。一般≤3×106个细胞若细胞量较大,可涡旋后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。若不能及时提取,裂解后溶液可至于-80℃储存3-6个月。

3. 含裂解物离心管置于室温静置5min.

该步骤促进核蛋白复合物的解离。

4. 向含裂解物离心管中加入140μL Solution CH, 用力摇动或涡旋15s。

彻底混合对于随后的相分离很重要。

5. 离心管置于室温静置2-3min.

6. 在4°C下以 12,000×g离心15min

离心后,样品分为3相:上层含有miRNA的无色水相;白色的相间和较低的红色有机相。上层水相的体积应约为 350μL。

7. 将上层水相转移到新的无酶1.5mL离心管中,加入约1.5倍体积(通常为525μL)无水乙醇,移液器吹打彻底混匀。不要离心,立即进行下一步骤。

加入乙醇后可能会形成沉淀,为正常现象,不会影响提取过程和结果。

8. 上一步骤混匀后的溶液700μL转移入RNA吸附柱中并套上2mL收集管,≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

吸附柱最大上柱量为700μL,若溶液过多可分多次上柱。后续操作若无特殊说明吸附柱均置于2mL收集管中。

9. 向吸附柱中加入700μL Buffer RWT(使用前请确认Buffer RWT是否按要求加入2倍体积无水乙醇, ≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

10. 向吸附柱中加入500μL Buffer RPE使用前请确认Buffer RPE是否按要求加入4倍体积无水乙醇,≥8000×g(≥10,000 rpm)离心30s,弃废液。

11. 重复步骤10一次。

12. 倒弃滤液,将吸附柱放入收集管中, 以最大转速(~13,400×g)离心3min干燥柱

13. 将吸附柱套入新的无酶1.5mL 离心管中,并置于无酶的环境中开盖静置5-10min至乙醇晾干。

若吸附柱中残留乙醇将会对纯化后的RNA的下游实验造成影响。

14. 向吸附柱膜正中央加入50-100μL RNase-Free Water,盖上盖子室温静置3-5 min置于离心机中 ≥12,000×g(≥13,000 rpm) 离心3min得到miRNA溶液。

RNA洗脱体积不应少于30μL,否则影响洗脱效率。洗脱后的RNA溶液应置于-80℃储存。

关注微信
购物车
回到顶部
联系客服