EK-1300 FastPure RNAEx ZOL 柱法总RNA提取试剂盒

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EK-1300 FastPure RNAEx ZOL 柱法总RNA提取试剂盒
货号 (Catalog Number): EK-1300

产品描述

产品介绍

本试剂盒可以快速地从组织、细胞、真菌、细菌、植物、寄生虫等各类样本中提取总RNA,最多可用于50μg RNA的提取。本产品仅供科研使用,请勿用于医药、临床治疗、食品级化妆品等用途。


存储条件

试剂盒室温干燥保存可至少稳定12个月。


需要额外准备的材料

 无RNase酶的1.5mL离心管

 无RNase酶的吸头

 干净的手套

 低温高速离心机

 物理研磨设备


开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。

 Buffer RW1作为浓缩液提供,在第一次使用前加入0.25倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

 Buffer RPE作为浓缩液提供,在第一次使用前加入4倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

 RNase-Free水中不含任何抑菌因子,室温放置或操作时可能会引入细菌或真菌污染,使用时尽量注意,推荐开瓶后分装保存以减少污染风险保证实验稳定性。

 RNA在RNAEx ZOL中时不会被RNase降解(室温短时间2-4h,-80℃长期约3-6个月保存)。但提取后继续处理过程中应使用不含   RNase的无酶离心管或玻璃器皿。


操作步骤:

1. 请根据样品种类进行以下步骤(1a为动物细胞,1b为动物组织1c为植物组织

1a. 收集动物细胞:悬浮细胞可直接300×g离心5min并仔细吸除上清留沉淀待使用;单层贴壁细胞可通过直接裂解法(吸尽培养基留下贴壁细胞,进行步骤2裂解)或胰酶处理法(吸尽培养基留下贴壁细胞,用PBS清洗细胞,吸除PBS后使用含0.10%-0.25%胰酶使细胞脱落,加入含有血清的培养基使胰酶失活后转入1.5mL无酶离心管中300×g离心5min,吸除上清留沉淀待使用)

注意:收集细胞数量不要超过1×107,收集细胞时一定要将细胞培养基去除干净,否则会导致步骤2时细胞裂解不完全,影响RNA与吸附柱的结合,导致RNA的产量降低。

1b. 动物组织匀浆裂解处理:将10mg-30mg动物组织转移入1.5mL无酶离心管中并加入700μL RNAEx ZOL(动物组织量不要超过30mg),使用研磨杵或电动研磨机将动物组织彻底研磨匀浆。直接进行步骤3.

匀浆时间根据样本裂解难易程度决定,亦可匀浆后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。RNAEx ZOL有较多有机试剂具一定毒性,匀浆时注意不要溅到皮肤或眼睛等部位,建议使用防护镜操作。

1c. 植物组织:50-100mg植物组织转移入1.5mL无酶离心管中并加入700μL RNAEx ZOL,使用研磨杵或电动研磨机将动物组织彻底研磨匀浆。直接进行步骤3.

2. 样品裂解:对于1a中使用直接裂解法的细胞应在培养皿或培养瓶中直接加入700μL RNAEx ZOL破碎细胞涡旋或吹匀混合。将裂解液移入无酶1.5mL离心管中。涡旋或移液器混合并确保没有细胞团块可见。

细胞沉淀不完全松动吹匀可能会导致裂解效率低下和RNA产量降低。一般≤3×106个细胞若细胞量较大,可涡旋后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。若不能及时提取,裂解后溶液可至于-80℃储存3-6个月。

3. 含裂解物离心管置于室温静置2-5min.

该步骤促进核蛋白复合物的解离。若细胞量较少,可不需静置;若细胞量较大,可适当延长静置裂解时间。

4. 向含裂解物离心管中加入140μL Buffer CH, 用力摇动或涡旋15s。

彻底混合对于随后的相分离很重要。

5. 离心管置于室温静置2-3min.

6. 在4°C下以 12,000×g离心15min

离心后,样品分为3相:上层含有RNA的无色水相;白色的中相间和下层红色有机相。上层水相的体积应约为 350μL。此步骤必须在4°C下进行。低温有助于在界面形成紧实的白色中间层,防止吸取上清时触碰到下层蛋白质和 DNA

7. 将上层水相转移到新的无酶1.5mL离心管中,加入等体积(约350 μL)无水乙醇,立即颠倒混匀或通过轻微涡旋混合。不要离心,立即进行下一步骤。

加入乙醇后可能会形成沉淀,为正常现象,不会影响提取过程和结果。

8. 上一步骤混匀后的溶液700μL转移入RNA吸附柱中并套上2mL收集管,≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

吸附柱最大上柱量为700μL,若溶液过多可分多次上柱。后续操作若无特殊说明吸附柱均置于2mL收集管中。

9. 向吸附柱中加入700μL Buffer RW1(使用前请确认Buffer RW1是否按要求加入0.25倍体积无水乙醇, ≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

10. 向吸附柱中加入500μL Buffer RPE使用前请确认Buffer RPE是否按要求加入4倍体积无水乙醇,≥8000×g(≥10,000 rpm)离心30s,弃废液。

11. 重复步骤10一次。

12. 倒弃滤液,将吸附柱放入收集管中, 以最大转速(~13,400×g)离心3min干燥柱

13. 将吸附柱套入新的无酶1.5mL离心管中,并置于无酶的环境中开盖静置5-10min至乙醇晾干。

若吸附柱中残留乙醇将会对纯化后的RNA的下游实验造成影响。

14. 向吸附柱膜正中央加入50-100μL RNase-Free Water,盖上盖子室温静置1-2 min置于离心机中 ≥12,000×g(≥13,000 rpm) 离心2min得到RNA溶液。

RNA洗脱体积不应少于30μL,否则影响洗脱效率。洗脱后的RNA溶液应置于-80℃储存。

产品规格

货期
现货
规格
50T、100T

应用领域

本产品适用于EK-1300、RNA提取、生物科研试剂、ECOTOP SCIENTIFIC等研究领域。ECOTOP SCIENTIFIC(广州亿涛生物科技有限公司)提供高品质生物科研试剂,服务科研院所与生物医药企业。

存储条件

室温干燥保存

品牌: ECOTOP SCIENTIFIC

常见问题 (FAQ)

提取的 RNA 应如何保存?

洗脱:50–100 μL RNase-Free Water 加在膜正中央,盖盖室温静置 1–2 min 后 ≥12,000×g(≥13,000 rpm)离心 2 min;洗脱体积不应少于 30 μL,否则影响洗脱效率。短期使用 -20℃(1 周内);长期 -80℃ 分装储存(每管单次用量),避免反复冻融。储存超过 6 个月使用前重新跑变性凝胶或 TapeStation 检查 RIN。

本试剂盒与单纯柱法(如 EK-1303)相比有什么优势?

EK-1303(纯柱法):操作快(25–35 min)、无苯酚、安全;缺点:高纤维、高脂肪、富 RNase 样品得率低或降解严重。本试剂盒(RNAEx ZOL + 柱):苯酚瞬时灭活 RNase,对顽固样品(脂肪组织、肿瘤、肝、脑)得率与完整性都更好;操作时间约 45–60 min,需通风柜操作 RNAEx ZOL 步骤。建议根据样品特性选择。

可以同时获得 DNA、RNA、蛋白吗?

本试剂盒针对总 RNA 优化。RNAEx ZOL 分相后:① 水相 → RNA(本试剂盒);② 中间界面 → DNA(可用柱法清理);③ 有机相 → 蛋白(异丙醇沉淀后清理)。如严格需要三组分共抽提,建议使用专用 DNA/RNA/Protein 共抽提试剂以保证三组分质量。

如何防止 RNase 污染破坏 RNA?

RNase 是 RNA 实验最大威胁。RNA 在 RNAEx ZOL 中时不会被 RNase 降解(室温短时间 2–4 h,-80℃ 长期约 3–6 个月保存)。但提取后继续处理过程中应使用不含 RNase 的无酶离心管或玻璃器皿。防护要点:① 全程 RNase-free 耗材(吸头、离心管、水);② 戴一次性手套并频繁更换;③ 操作台用 EX-0411 核酸酶清除剂或 0.1% DEPC 处理;④ Buffer RW1 第一次使用前加入 0.25 倍体积乙醇,Buffer RPE 第一次使用前加入 4 倍体积乙醇;⑤ RNase-Free Water 开瓶后分装保存。

OD260/OD280 比值低于 1.8 怎么办?

本试剂盒提取的 RNA 理想 OD260/OD280 应 ≥1.8。要点:① 严格按比例 RNAEx ZOL + Buffer CH 混匀后离心彻底分相;② 取水相时不要触碰相界面(界面含变性蛋白和 DNA);③ 增加 Buffer RPE 洗涤次数(重复一次)。

氯仿萃取后水相浑浊或体积异常怎么办?

分相后样品分为 3 相——上层无色水相(约 350 µL)、白色中相、下层红色有机相;水相体积应约 350 µL,此步骤建议在 4℃ 进行——低温有助于在界面形成紧实的白色中间层,防止吸取上清时触碰到下层蛋白质和 DNA。水相浑浊原因:① 蛋白裂解不完全(增加涡旋时间或室温裂解 2–5 min);② 起始样品量过大(动物组织不要超过 30 mg,培养细胞 ≤1×10⁷);③ 富脂样品请改用 EK-1305。

典型得率与 RIN 值?

中等表达组织 30 mg(说明书上限):30–150 µg;培养细胞 1×10⁶:5–15 µg;植物 50 mg:10–60 µg;细菌 10⁹ 细胞:20–100 µg。RIN(RNA Integrity Number)一般 ≥8(新鲜样品按说明书规范操作),冻存或反复冻融样品 RIN 6–8。下游 NGS 要求 RIN ≥7,qPCR 要求 RIN ≥6。

适用哪些样品类型?

① 动物细胞(贴壁/悬浮,≤1×10⁷ 细胞);② 动物组织(10–30 mg,加 700 µL RNAEx ZOL 研磨匀浆);③ 植物组织(50–100 mg,加 700 µL RNAEx ZOL 研磨匀浆);④ 真菌、细菌、寄生虫(按各自破壁要求处理后加 RNAEx ZOL);⑤ 体外转录产物 / RNA 反应清理。RNAEx ZOL 有较多有机试剂具一定毒性,匀浆时注意不要溅到皮肤或眼睛等部位,建议使用防护镜操作。

本试剂盒的核心工艺是什么?

本试剂盒结合「RNAEx ZOL(异硫氰酸胍 + 苯酚)裂解 + Buffer CH 助分相 + 硅胶膜柱纯化」两阶段工艺。第一阶段:RNAEx ZOL 变性 RNase 与蛋白,加 140 µL Buffer CH 涡旋 15 s + 室温静置 2–3 min + 4℃ 12,000×g 离心 15 min 分相得到上层无色水相(约 350 µL);第二阶段:水相加等体积无水乙醇后转入硅胶膜柱,通过 Buffer RW1 / Buffer RPE 洗涤、RNase-Free Water 洗脱获得高纯度 RNA。最多可用于 40 µg RNA 的提取。

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常见问题解答(9)
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产品介绍

本试剂盒可以快速地从组织、细胞、真菌、细菌、植物、寄生虫等各类样本中提取总RNA,最多可用于50μg RNA的提取。本产品仅供科研使用,请勿用于医药、临床治疗、食品级化妆品等用途。


存储条件

试剂盒室温干燥保存可至少稳定12个月。


需要额外准备的材料

 无RNase酶的1.5mL离心管

 无RNase酶的吸头

 干净的手套

 低温高速离心机

 物理研磨设备


开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。

 Buffer RW1作为浓缩液提供,在第一次使用前加入0.25倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

 Buffer RPE作为浓缩液提供,在第一次使用前加入4倍体积的乙醇(96-100%)以获得工作溶液。

 RNase-Free水中不含任何抑菌因子,室温放置或操作时可能会引入细菌或真菌污染,使用时尽量注意,推荐开瓶后分装保存以减少污染风险保证实验稳定性。

 RNA在RNAEx ZOL中时不会被RNase降解(室温短时间2-4h,-80℃长期约3-6个月保存)。但提取后继续处理过程中应使用不含   RNase的无酶离心管或玻璃器皿。


操作步骤:

1. 请根据样品种类进行以下步骤(1a为动物细胞,1b为动物组织1c为植物组织

1a. 收集动物细胞:悬浮细胞可直接300×g离心5min并仔细吸除上清留沉淀待使用;单层贴壁细胞可通过直接裂解法(吸尽培养基留下贴壁细胞,进行步骤2裂解)或胰酶处理法(吸尽培养基留下贴壁细胞,用PBS清洗细胞,吸除PBS后使用含0.10%-0.25%胰酶使细胞脱落,加入含有血清的培养基使胰酶失活后转入1.5mL无酶离心管中300×g离心5min,吸除上清留沉淀待使用)

注意:收集细胞数量不要超过1×107,收集细胞时一定要将细胞培养基去除干净,否则会导致步骤2时细胞裂解不完全,影响RNA与吸附柱的结合,导致RNA的产量降低。

1b. 动物组织匀浆裂解处理:将10mg-30mg动物组织转移入1.5mL无酶离心管中并加入700μL RNAEx ZOL(动物组织量不要超过30mg),使用研磨杵或电动研磨机将动物组织彻底研磨匀浆。直接进行步骤3.

匀浆时间根据样本裂解难易程度决定,亦可匀浆后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。RNAEx ZOL有较多有机试剂具一定毒性,匀浆时注意不要溅到皮肤或眼睛等部位,建议使用防护镜操作。

1c. 植物组织:50-100mg植物组织转移入1.5mL无酶离心管中并加入700μL RNAEx ZOL,使用研磨杵或电动研磨机将动物组织彻底研磨匀浆。直接进行步骤3.

2. 样品裂解:对于1a中使用直接裂解法的细胞应在培养皿或培养瓶中直接加入700μL RNAEx ZOL破碎细胞涡旋或吹匀混合。将裂解液移入无酶1.5mL离心管中。涡旋或移液器混合并确保没有细胞团块可见。

细胞沉淀不完全松动吹匀可能会导致裂解效率低下和RNA产量降低。一般≤3×106个细胞若细胞量较大,可涡旋后静置3-5min延长裂解时间(期间颠倒吹匀2-3次)。若不能及时提取,裂解后溶液可至于-80℃储存3-6个月。

3. 含裂解物离心管置于室温静置2-5min.

该步骤促进核蛋白复合物的解离。若细胞量较少,可不需静置;若细胞量较大,可适当延长静置裂解时间。

4. 向含裂解物离心管中加入140μL Buffer CH, 用力摇动或涡旋15s。

彻底混合对于随后的相分离很重要。

5. 离心管置于室温静置2-3min.

6. 在4°C下以 12,000×g离心15min

离心后,样品分为3相:上层含有RNA的无色水相;白色的中相间和下层红色有机相。上层水相的体积应约为 350μL。此步骤必须在4°C下进行。低温有助于在界面形成紧实的白色中间层,防止吸取上清时触碰到下层蛋白质和 DNA

7. 将上层水相转移到新的无酶1.5mL离心管中,加入等体积(约350 μL)无水乙醇,立即颠倒混匀或通过轻微涡旋混合。不要离心,立即进行下一步骤。

加入乙醇后可能会形成沉淀,为正常现象,不会影响提取过程和结果。

8. 上一步骤混匀后的溶液700μL转移入RNA吸附柱中并套上2mL收集管,≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

吸附柱最大上柱量为700μL,若溶液过多可分多次上柱。后续操作若无特殊说明吸附柱均置于2mL收集管中。

9. 向吸附柱中加入700μL Buffer RW1(使用前请确认Buffer RW1是否按要求加入0.25倍体积无水乙醇, ≥8000×g(≥10,000 rpm)室温下离心30s,弃废液。

10. 向吸附柱中加入500μL Buffer RPE使用前请确认Buffer RPE是否按要求加入4倍体积无水乙醇,≥8000×g(≥10,000 rpm)离心30s,弃废液。

11. 重复步骤10一次。

12. 倒弃滤液,将吸附柱放入收集管中, 以最大转速(~13,400×g)离心3min干燥柱

13. 将吸附柱套入新的无酶1.5mL离心管中,并置于无酶的环境中开盖静置5-10min至乙醇晾干。

若吸附柱中残留乙醇将会对纯化后的RNA的下游实验造成影响。

14. 向吸附柱膜正中央加入50-100μL RNase-Free Water,盖上盖子室温静置1-2 min置于离心机中 ≥12,000×g(≥13,000 rpm) 离心2min得到RNA溶液。

RNA洗脱体积不应少于30μL,否则影响洗脱效率。洗脱后的RNA溶液应置于-80℃储存。

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