EK-1217 FastPure FFPE石蜡切片基因组DNA提取试剂盒

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EK-1217 FastPure FFPE石蜡切片基因组DNA提取试剂盒
货号 (Catalog Number): EK-1217

产品描述

产品介绍

本产品FFPE提取试剂盒专为从甲醛固定、石蜡包埋的组织切片中提取DNA而设计。该试剂盒采用特殊的裂解条件释放组织切片中的DNA,并克服了由于甲醛交联核酸而引起的抑制效应。纯化的DNA可用于各种下游应用,如PCR、单核苷酸多态性(SNP)和短串联重复(STR)基因分型以及药物基因组研究等。


存储条件

Proteinase K Solution可在2~8℃保存,其余试剂可以室温(15~25℃)下保存12个月。


需要额外准备的材料

□ 无水乙醇(96%-100%)

□ 无菌1.5mL离心管


开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项:

□ Buffer ATL, Buffer AL或Buffer AW1若有沉淀析出,可在55℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。

□ Proteinase K Solution保存于2-8℃,反复冻融会影响其活性。

□ 小型高速离心机(~13000rpm)

□ 水浴锅/加热块温度分别设置至56℃和90℃


开始前试剂准备

□ 按瓶子标签所示,加入相应体积的无水乙醇稀释Buffer AW1,于室温密封保存。

□ 按瓶子标签所示,加入相应体积的无水乙醇稀释Buffer AW2,于室温密封保存。


注意事项

1. 拿到样品后要尽快在4-10%的福尔马林中固定,固定时间以8-24小时为宜。时间过长导致基因组断裂,影响下游实验。确保包埋前的样品彻底脱水,残留的福尔马林会抑制PCR检测酶的作用。

2. 本产品所提取的DNA的完整性依赖于样本类型、储存时间以及固定条件。如果甲醛固定时间过长或样本存放时间过久(超过1年),则易导致DNA完整性受损,无法扩出长片段。由于 FFPE 样本的特殊性,建议下游PCR扩增产物长度控制在200 bp以内,以获得最佳成功率。

3. 环境温度较低时建议观察Buffer ATL是否澄清,若有沉淀,必须55°C加热至完全透明方可使用,否则裂解效率会大打折扣。

4. 本试剂盒中离心步骤全程室温离心,低温会使石蜡析出,这是FFPE提取失败最常见的原因。


操作步骤:

1. 样本处理

a. 石蜡切片:取5-8张石蜡切片,每张厚度为5-10μm,尺寸为1×1cm。

b. 石蜡块:使用手术刀刮取约30mg的组织样本(尽量去除多余的石蜡)。注意:如果样品表面暴露于空气中,最初刮取的2~3片弃掉不用。

c. 福尔马林等固定液中的样本:取30mg样本,用手术刀切成数块,置于1.5mL离心管中,加入500μL 1×PBS,涡旋振荡混匀,以12,000×g室温离心1min。弃去上清,重复此步骤3次。

2. 将石蜡切片或石蜡块切片放入1.5或2mL微量离心管,并向样品中加入1mL二甲苯。关闭盖子,烈振荡10s

3. 在室温(15-25°C)下以12,000×g离心2 min,弃上清注意:不要倒掉沉淀。

4. 向沉淀中加入1mL无水乙醇并通过涡旋混合约10s

5. 在室温(15-25°C)下以12,000×g离心2 min,弃上清注意:不要倒掉沉淀。

注意:尽可能用细管吸弃更多上清乙醇液。若沉淀中仍有明显的石蜡块,建议重复一次二甲苯脱蜡步骤。加入乙醇后务必彻底涡旋,以确保二甲苯被完全洗去。

6. 打开离心管盖,并在室温放置10min或直到所有残留的乙醇发。

7. 加入180μL Buffer ATL20μL蛋白酶K溶液,并通过涡旋混合。在56°C下孵育1h(或直到样品完全裂解)。

8. 转移到90°C下孵育1h

注意:在Buffer ATL中的90°C孵育部分地逆转了核酸的甲醛修饰。严禁超过90°C或延长孵育时间,否则会导致 DNA 进一步降解,影响下游长片段PCR扩增。此步骤用于释放被甲醛锁住的 DNA碱基,是保证PCR扩增成功的前提。

9. (可选步骤加入2μL RNase A Solution(100mg/mL)至消化液中,颠倒混匀,室温孵育2min。注:在加入RNase A前,让样品冷却至室温。

10. 在上管样品中加入200μL Buffer AL,必须先剧烈涡旋混匀;然后加入200μL无水乙醇,再次通过涡旋彻底混合。

注意:加入Buffer AL和乙醇时可能会形成白色沉淀物为正常现象,不会影响后续提取。

11. 把吸附柱套在2mL收集管中。将上一步骤所得溶液加入柱中,8000×g离心1min。倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。

注意:若柱子出现堵塞,可提高转速至14000×g离心3-5min。若溶液体积超过700μL则分次上柱。

12. 向吸附柱中加入500μL Buffer Buffer AW1(请先检查是否已加入无水乙醇)8000×g离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。

13. 向吸附柱中加入500μL Buffer AW2(请先检查是否已加入无水乙醇)8000×g离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。

14. 重复步骤13一次。

15. 倒掉收集管中的废液后将吸附柱再次套入收集管中,最大转速 (~13,400×g)离心2min以干燥吸附柱膜。将吸附柱移入新的 1.5 mL 离心管,开盖室温静置 5-10 min。

注意:Buffer AW2中的乙醇残留会影响后续的酶反应实验,直至观察吸附柱膜表面无明显液体反光,且闻不到酒精味。若环境湿度大,可适当延长晾干时间。

16. 向吸附柱膜中央位置悬空滴加50-100μL Buffer ATE,室温静置1min后,最大转速 (~13,400×g)离心2min收集DNA溶液并置于-20℃保存。

注意:洗脱体积不应小于30μL,体积过少会影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。为了提高DNA的回收量,可将Buffer ATE加热(约60℃)并洗脱两次,可增加约15-20%得率。对于组织量较少的切片(<3张),建议洗脱体积缩小至 30-50μL,以获得更高浓度的 DNA 用于下游扩增。

产品规格

货期
1-2天
规格
50T、100T

应用领域

本产品适用于EK-1217、基因组DNA提取、生物科研试剂、ECOTOP SCIENTIFIC等研究领域。ECOTOP SCIENTIFIC(广州亿涛生物科技有限公司)提供高品质生物科研试剂,服务科研院所与生物医药企业。

存储条件

室温(15~25℃)下保存

品牌: ECOTOP SCIENTIFIC

常见问题 (FAQ)

提取的 DNA 应如何保存?

短期 4℃(≤1 周);长期 -20℃ 或 -80℃ 分装储存(每管单次用量 + 备份)。FFPE DNA 因本身高度降解,反复冻融后片段长度还会进一步下降,建议按下游应用预分装。

从 LCM 激光显微切割样品如何提取?

微量样品(<100 cells,<10 ng 起始量)建议:① 减小裂解液体积至 50 μL;② Proteinase K 用量减半但消化时间延长(56℃ 4–16 h 或过夜);③ 加 carrier RNA / 糖原作为载体;④ 减小洗脱体积至 30–50 μL(说明书原文:对于组织量较少的切片(<3 张),建议洗脱体积缩小至 30–50 μL,以获得更高浓度的 DNA 用于下游扩增);⑤ 必要时用 WGA(如 Repli-G FFPE)扩增模板。

可以用于哪些下游应用?

PCR、单核苷酸多态性(SNP)和短串联重复(STR)基因分型以及药物基因组研究、短扩增子 PCR(基因突变热点、特定外显子)、NGS 文库(短读长 panel 测序、外显子组、肿瘤突变检测)、定量 PCR(基因拷贝数检测)、甲基化分析(亚硫酸盐转化)、FISH 探针制备。不适合:长读长测序(PacBio HiFi / ONT)、需要 ≥10 kb 完整片段的应用。

哪些样品类型不适合本试剂盒或需要特殊优化?

① 拿到样品后要尽快在 4–10% 的福尔马林中固定,固定时间以 8–24 小时为宜——时间过长导致基因组断裂;② 确保包埋前样品彻底脱水,残留福尔马林会抑制 PCR 检测酶;③ FFPE 样本的 DNA 完整性依赖于样本类型、储存时间以及固定条件,储存超过 1 年易导致 DNA 完整性受损;④ 本试剂盒中离心步骤全程室温,低温会使石蜡析出,这是 FFPE 提取失败最常见的原因;⑤ 环境温度低时观察 Buffer ATL 是否澄清,有沉淀必须 55℃ 加热至完全透明方可使用。冷冻组织请改用 EK-1204。

OD260/OD280 比值正常但 PCR 不工作怎么办?

FFPE DNA 的 OD260/OD280 在 1.7–2.0 不能完全反映可用性——即使纯度好,DNA 仍可能高度断裂或带有甲醛加合物。建议:① 用 Qubit dsDNA HS 测有效双链 DNA 浓度(NanoDrop 会高估);② 模板用量加倍(FFPE 推荐 100–200 ng / qPCR);③ 选择短扩增子(<200 bp,与说明书建议一致);④ 若 PCR 仍失败,使用 PreCR 类酶预处理(NEB)修复部分损伤;⑤ 福尔马林固定时间过长(>24 h)或样本存放 >1 年都会显著加重交联损伤。

为什么 90℃ 去交联(de-crosslinking)步骤至关重要?

甲醛与碱基(特别是 dCMP)形成羟甲基化加合物,PCR 聚合酶遇到此类损伤会停滞或引入错误。56℃ Buffer ATL 中孵育 1 h(或直到样品完全裂解)→ 转移到 90℃ 下再孵育 1 h。严禁超过 90℃ 或延长孵育时间,否则会导致 DNA 进一步降解,影响下游长片段 PCR 扩增。此步骤用于释放被甲醛锁住的 DNA 碱基,是保证 PCR 扩增成功的前提。该步骤可使 PCR / NGS 成功率从 50% 提升至 ≥90%。

DNA 片段长度(fragment size)一般多大?

FFPE DNA 因甲醛交联与水解,片段长度通常较短:短期储存(<3 年)样品平均 1–5 kb;长期储存或酸性甲醛固定样品平均 200 bp – 1 kb;偶有 <200 bp 的极度降解样品。由于 FFPE 样本的特殊性,建议下游 PCR 扩增产物长度控制在 200 bp 以内,以获得最佳成功率。这决定了下游应用:短读长 NGS(Illumina)、qPCR 与扩增子测序均可用;不适合长读长测序。

脱蜡步骤有哪些注意事项?

① 加 1 mL 二甲苯,剧烈振荡 10 s;② 室温 12,000×g 离心 2 min,弃上清但不要倒掉沉淀;③ 加 1 mL 无水乙醇涡旋 10 s;④ 室温 12,000×g 离心 2 min 弃上清;⑤ 打开管盖室温放置 10 min 或直至所有残留乙醇挥发。尽可能用细管吸弃更多上清乙醇液。若沉淀中仍有明显的石蜡块,建议重复一次二甲苯脱蜡步骤。加入乙醇后务必彻底涡旋,以确保二甲苯被完全洗去。二甲苯有毒,请在通风柜内操作。

典型起始量与得率是多少?

① 石蜡切片:5–8 张,每张厚度 5–10 μm,尺寸 1×1 cm;② 石蜡块:手术刀刮取约 30 mg 组织样本(尽量去除多余的石蜡,最初刮取的 2–3 片弃掉不用);③ 福尔马林等固定液样本:取 30 mg。典型得率:新鲜 FFPE 块(<1 年)通常 1–10 μg DNA;储存 1–5 年的样品 0.5–5 μg;储存 >10 年或固定不当样品 0.1–2 μg。得率受石蜡块年限、固定方式(中性缓冲甲醛 vs. 酸性甲醛)影响显著。

为什么 FFPE 样品需要专用试剂盒?

甲醛固定后蛋白与 DNA 之间会形成共价交联,且石蜡覆盖使常规裂解液无法接触组织。本试剂盒专为 FFPE 切片设计,采用「二甲苯脱蜡 + 56℃ Buffer ATL 裂解 + 90℃ 高温去交联 + 硅胶柱纯化」工艺:先 1 mL 二甲苯剧烈振荡溶解石蜡,无水乙醇洗去二甲苯;再 56℃ 蛋白酶 K 消化 1 h,关键的 90℃ 孵育 1 h 部分逆转甲醛核酸交联;最后用 Buffer AW1/AW2 漂洗、Buffer ATE 洗脱。

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产品介绍

本产品FFPE提取试剂盒专为从甲醛固定、石蜡包埋的组织切片中提取DNA而设计。该试剂盒采用特殊的裂解条件释放组织切片中的DNA,并克服了由于甲醛交联核酸而引起的抑制效应。纯化的DNA可用于各种下游应用,如PCR、单核苷酸多态性(SNP)和短串联重复(STR)基因分型以及药物基因组研究等。


存储条件

Proteinase K Solution可在2~8℃保存,其余试剂可以室温(15~25℃)下保存12个月。


需要额外准备的材料

□ 无水乙醇(96%-100%)

□ 无菌1.5mL离心管


开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项:

□ Buffer ATL, Buffer AL或Buffer AW1若有沉淀析出,可在55℃水浴中重新溶解,摇匀后使用。

□ Proteinase K Solution保存于2-8℃,反复冻融会影响其活性。

□ 小型高速离心机(~13000rpm)

□ 水浴锅/加热块温度分别设置至56℃和90℃


开始前试剂准备

□ 按瓶子标签所示,加入相应体积的无水乙醇稀释Buffer AW1,于室温密封保存。

□ 按瓶子标签所示,加入相应体积的无水乙醇稀释Buffer AW2,于室温密封保存。


注意事项

1. 拿到样品后要尽快在4-10%的福尔马林中固定,固定时间以8-24小时为宜。时间过长导致基因组断裂,影响下游实验。确保包埋前的样品彻底脱水,残留的福尔马林会抑制PCR检测酶的作用。

2. 本产品所提取的DNA的完整性依赖于样本类型、储存时间以及固定条件。如果甲醛固定时间过长或样本存放时间过久(超过1年),则易导致DNA完整性受损,无法扩出长片段。由于 FFPE 样本的特殊性,建议下游PCR扩增产物长度控制在200 bp以内,以获得最佳成功率。

3. 环境温度较低时建议观察Buffer ATL是否澄清,若有沉淀,必须55°C加热至完全透明方可使用,否则裂解效率会大打折扣。

4. 本试剂盒中离心步骤全程室温离心,低温会使石蜡析出,这是FFPE提取失败最常见的原因。


操作步骤:

1. 样本处理

a. 石蜡切片:取5-8张石蜡切片,每张厚度为5-10μm,尺寸为1×1cm。

b. 石蜡块:使用手术刀刮取约30mg的组织样本(尽量去除多余的石蜡)。注意:如果样品表面暴露于空气中,最初刮取的2~3片弃掉不用。

c. 福尔马林等固定液中的样本:取30mg样本,用手术刀切成数块,置于1.5mL离心管中,加入500μL 1×PBS,涡旋振荡混匀,以12,000×g室温离心1min。弃去上清,重复此步骤3次。

2. 将石蜡切片或石蜡块切片放入1.5或2mL微量离心管,并向样品中加入1mL二甲苯。关闭盖子,烈振荡10s

3. 在室温(15-25°C)下以12,000×g离心2 min,弃上清注意:不要倒掉沉淀。

4. 向沉淀中加入1mL无水乙醇并通过涡旋混合约10s

5. 在室温(15-25°C)下以12,000×g离心2 min,弃上清注意:不要倒掉沉淀。

注意:尽可能用细管吸弃更多上清乙醇液。若沉淀中仍有明显的石蜡块,建议重复一次二甲苯脱蜡步骤。加入乙醇后务必彻底涡旋,以确保二甲苯被完全洗去。

6. 打开离心管盖,并在室温放置10min或直到所有残留的乙醇发。

7. 加入180μL Buffer ATL20μL蛋白酶K溶液,并通过涡旋混合。在56°C下孵育1h(或直到样品完全裂解)。

8. 转移到90°C下孵育1h

注意:在Buffer ATL中的90°C孵育部分地逆转了核酸的甲醛修饰。严禁超过90°C或延长孵育时间,否则会导致 DNA 进一步降解,影响下游长片段PCR扩增。此步骤用于释放被甲醛锁住的 DNA碱基,是保证PCR扩增成功的前提。

9. (可选步骤加入2μL RNase A Solution(100mg/mL)至消化液中,颠倒混匀,室温孵育2min。注:在加入RNase A前,让样品冷却至室温。

10. 在上管样品中加入200μL Buffer AL,必须先剧烈涡旋混匀;然后加入200μL无水乙醇,再次通过涡旋彻底混合。

注意:加入Buffer AL和乙醇时可能会形成白色沉淀物为正常现象,不会影响后续提取。

11. 把吸附柱套在2mL收集管中。将上一步骤所得溶液加入柱中,8000×g离心1min。倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。

注意:若柱子出现堵塞,可提高转速至14000×g离心3-5min。若溶液体积超过700μL则分次上柱。

12. 向吸附柱中加入500μL Buffer Buffer AW1(请先检查是否已加入无水乙醇)8000×g离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。

13. 向吸附柱中加入500μL Buffer AW2(请先检查是否已加入无水乙醇)8000×g离心1min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。

14. 重复步骤13一次。

15. 倒掉收集管中的废液后将吸附柱再次套入收集管中,最大转速 (~13,400×g)离心2min以干燥吸附柱膜。将吸附柱移入新的 1.5 mL 离心管,开盖室温静置 5-10 min。

注意:Buffer AW2中的乙醇残留会影响后续的酶反应实验,直至观察吸附柱膜表面无明显液体反光,且闻不到酒精味。若环境湿度大,可适当延长晾干时间。

16. 向吸附柱膜中央位置悬空滴加50-100μL Buffer ATE,室温静置1min后,最大转速 (~13,400×g)离心2min收集DNA溶液并置于-20℃保存。

注意:洗脱体积不应小于30μL,体积过少会影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。为了提高DNA的回收量,可将Buffer ATE加热(约60℃)并洗脱两次,可增加约15-20%得率。对于组织量较少的切片(<3张),建议洗脱体积缩小至 30-50μL,以获得更高浓度的 DNA 用于下游扩增。

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