EK-1201 FastPure血液基因组提取试剂盒

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EK-1201 FastPure血液基因组提取试剂盒
货号 (Catalog Number): EK-1201

产品描述

产品介绍

本试剂盒适用于哺乳动物血液核酸提取,不含苯酚等有毒化学试剂组分,采用独特的缓冲液配方Buffer IRB最大限度去除血液抑制剂的影响,同时应用先进的硅胶膜吸附技术,操作简单、快速。得到的DNA 比传统试剂盒纯度更高,可直接用于酶切、转化、测序及PCR 等分子生物学实验。


存储条件

本产品除Proteinase K溶液和RNase溶液外,其余试剂可在室温(15-25℃)保存12个月。低温下Buffer BL或Buffer IRB可能会有沉淀形成,使用时需55℃水浴让沉淀完全溶解。Proteinase K溶液和RNase A溶液冰袋运输,收到产品后请分装保存于-20℃。


需要额外准备的材料

□ 无水乙醇(96%-100%)

□ 无菌1.5/2mL离心管


开始前注意事项 务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项

● Buffer BL和Buffer IRB是如有混浊现象,可在55℃水浴中加热几分钟,即可恢复澄清。

● 基因组提取所有步骤都在室温(15-25°C)下进行。

● 样本要求:本试剂盒首选EDTA抗凝血(通常为紫色盖真空管)。亦可使用柠檬酸钠(ACD/枸橼酸钠)抗凝血。严禁或不建议使用肝素抗凝血(通常为绿色盖真空管),因为残留的肝素会严重抑制下游PCR扩增及酶促反应。


开始前试剂准备

□ 按瓶子标签所示,Buffer IRB及Buffer BW中加入指定体积的无水乙醇稀释,于室温密封保存。


DNA浓度及纯度检测

回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测纯度与浓度。

DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。

OD260/OD280比值应为1.7-2.0,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用ddH2O,比值会略低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。


应用领域

适合于从约10μL-1mL抗凝血液、血清、血浆、尿液、或其它体液样品中直接提取总DNA。获得的DNA包括了基因组 DNA(如淋巴细胞、线粒体DNA、游离的DNA(>100bp)、以及病毒DNA(如乙肝)等;


操作步骤:

1. 转移250μL抗凝的血液,血清,血浆或其它体液样品至蛋白酶的离心管中。轻轻振荡混匀。若血液小于250μL,用PBS或Buffer ATE调整总体积至250μL
注意:首选EDTA抗凝血。亦可使用柠檬酸钠抗凝。不建议使用肝素抗凝,残留的肝素会严重抑制下游PCR反应。

2. 加入15 μL Proteinase K溶液,最高速度涡旋混匀5秒。

注意:Proteinase K溶液不能与Buffer BL先混合。

3. 加入250μL Buffer BL至样品中。立即颠倒3-5次混匀,最高速度涡旋混匀15-20秒。后56℃水浴15分钟,其间涡旋混匀2-3次。

注意:涡旋时须让裂解液与血液充分混匀才能保证裂解效果。水浴结束后,简短离心以收集管盖及管壁的水滴。

4. (可选步骤)若需去除RNA,加入10μL RNase A Solution至裂解液中,室温静置 10分钟。

5. 加入250μL无水乙醇至裂解样品中,盖上盖子,快速颠倒3-5次,涡旋混匀30秒。

6. 把DNA结合柱装在2mL收集管中。转移混合液至柱子中,并以10,000×g离心1分钟。

7. 倒弃流出液,把柱子重新装回收集管中。加入500μL Buffer IRB(请先检查是否已加入无水乙醇)至柱子上并以10,000×g离心1分钟。

8. 倒弃流出液,把柱子重新装回收集管中。加入500μL Buffer BW(请先检查是否已加入无水乙醇)至柱子中,10,000×g离心1分钟。

9. 重复操作步骤8一次。

10. 倒弃流出液,把柱子重新装回收集管中。12,000×g离心空柱2分钟,以甩干柱子的乙醇残留。将吸附柱移入新的1.5 mL离心管,室温开盖晾干5-10 min。

注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验,务必执行晾干步骤,并确保吸附柱中无肉眼可见的残留液体。

11. 向膜中央悬空滴加30-100μL Buffer ATE,室温静置2分钟后以12,000×g离心2分钟收集离心下的基因组DNA。

Buffer ATE在55-60℃预热后加入膜中央洗脱可提高核酸获得率。静置时间有利于大分子基因组DNA释放

12. 弃去柱子,将基因组DNA溶液于-20℃保存(短期可保存2-8℃)或进行下游实验。

附加方案处理 0.25-1mL 的血液DNA抽提 (注:该方案需要另外订购 Buffer RBC)

① 转移0.25-1mL抗凝血液样品至2-15mL 离心管中。

② 加入2.5倍体积 Buffer RBC至样品中,颠倒混匀5-10次并静置3分钟。

③ 2,000×g离心5分钟。小心倒弃上清液,并反扣于吸水纸上吸尽残液。(注:倒弃上清液时,小心不要倒弃细胞核沉淀。)

④ 加入250μL灭菌水和25μL蛋白酶 K溶液到样品中。涡旋30秒打散沉淀团。

⑤ 按前述第3步加入Buffer BL开始进行操作。


常见问题

1.  柱子堵塞

 样品裂解不充分: 样品与Buffer BL混匀不充分。重新提取,加入Buffer BL后先颠倒混匀3-5次,然后以最高速度涡旋让样品与Buffer BL充分混匀。

 Proteinase K活性下降: 重新制备Proteinase K。使用后Proteinase K必须保存于-20℃。Proteinase K与Buffer BL不能预先混合。

 样品含凝血块: 处理陈旧的血液样品时,加大蛋白酶的用量,或用附加方案进行提取。

 样品含固体颗粒:在第5步加入乙醇前,10,000×g离心3分钟去除未消化的杂质,转移上清液至新的离心管后再加入乙醇。

 样品用量太多: 白膜层、浓缩血液、细胞悬液中含在大量的细胞,减少样品量。

2.  DNA纯度不达标

 血液样品中存在凝血块: 加大蛋白酶K的用量,消化过程中用移液枪吸打几次打散凝块。或通过离心去除。处理凝血较多的样品时,需用匀浆器充分匀浆凝块。

 样品裂解不充分: 样品与Buffer BL混匀不充分。重新提取加入Buffer BL后延长混匀及涡旋时间

3.  DNA产量低

 血浆或血清等无细胞体液样品,其DNA含量低,通常只有ng级。

 第5步加入乙醇后混匀不充分或乙醇加入的体积不够。

 洗脱不充分: 洗脱液需加到膜中央,可增加洗脱体积或次数。

产品规格

货期
1-2天
规格
50T、100T

应用领域

本产品适用于EK-1201、基因组DNA提取、生物科研试剂、ECOTOP SCIENTIFIC等研究领域。ECOTOP SCIENTIFIC(广州亿涛生物科技有限公司)提供高品质生物科研试剂,服务科研院所与生物医药企业。

存储条件

室温(15-25℃)保存

品牌: ECOTOP SCIENTIFIC

常见问题 (FAQ)

提取的 DNA 应如何保存?

短期:4℃ 储存(1–2 周)。长期:-20℃ 分装储存(每管单次用量 + 备份),避免反复冻融。在试剂盒提供的洗脱缓冲液中保存稳定性最佳;用纯水洗脱时建议立即冻存。储存 >5 年的样品建议重新电泳验证完整性。洗脱体积建议 50–100 μL,不应小于 30 μL。

从冻存血液中提取效果会变差吗?

冻存血液(-20℃ / -80℃)若储存得当(避免反复冻融),DNA 完整性与得率与新鲜血样相当。建议:① 缓慢冰上解冻;② 轻轻颠倒混匀,避免剧烈涡旋导致 DNA 断裂;③ 解冻后尽快提取,不要再次冻存原样品。

白细胞少(如老年患者、化疗后患者)样品如何提高得率?

方法:① 增大起始体积(≤柱上限);② 先用红细胞裂解液(RBC lysis)富集白细胞,弃红细胞与血浆,仅用白细胞 pellet 上柱;③ 56℃ 蛋白酶 K 消化延长至 2 小时;④ 选择更小洗脱体积(30–50 μL)以提高 DNA 浓度。

提取后可见洗脱液浑浊,原因是什么?

洗脱液浑浊通常是颗粒物(变性蛋白、白细胞碎片)残留。原因可能:① 蛋白酶 K 消化不完全(延长消化);② 上柱前样品未完全裂解(裂解后应清亮);③ 离心力或时间不足。处理方法:13,000 × g 离心 1 分钟取上清继续使用,或重新上柱过滤。

可以用于 NGS 文库构建吗?

可以。本试剂盒提取的 DNA 满足主流 NGS 文库构建(Illumina、华大、MGI)的要求。建议文库构建前用 Qubit 而非 NanoDrop 测定浓度(更准确),并通过琼脂糖凝胶或 TapeStation 检查完整性。

提取的 DNA 适合哪些下游应用?

本试剂盒提取的基因组 DNA(典型片段长度 30–50 kb)适用于:PCR / qPCR、Sanger 测序、二代测序文库构建(短读长 + 长读长)、SNP 分型、限制性片段长度多态性(RFLP)、Southern blot、CRISPR 基因组分型、HLA 配型、法医学应用等。如需 >100 kb 高分子量 DNA(如 Oxford Nanopore 或 PacBio HiFi),建议使用专用 HMW DNA 提取试剂盒。

OD260/OD280 比值偏低(<1.7)怎么办?

本试剂盒提取的 gDNA OD260/OD280 理想值为 1.7–2.0。比值低于 1.7 通常提示蛋白污染。常见原因:① 蛋白酶 K 消化时间不足(建议 56℃ ≥30 分钟,复杂样品延长至 1–2 小时);② 红细胞溶解不完全,血红素干扰;③ 洗涤步骤乙醇浓度或体积不足。建议:延长 56℃ 消化、加大裂解液体积、增加一次含乙醇漂洗液洗涤。

抗凝剂选择对提取有什么影响?

EDTA 与柠檬酸钠抗凝血是最常用且对提取无明显干扰的样品;肝素抗凝血含肝素会抑制下游 PCR,建议加肝素酶 I 在 37℃ 处理 15 分钟后再上柱,或更换抗凝管。冷冻血液应在冰上缓慢解冻并轻轻颠倒混匀,避免红细胞过度溶血干扰柱结合。

从 200 μL 全血典型可以获得多少 DNA?

正常成人外周血白细胞数约 4–11 × 10⁹/L,对应 200 μL 全血通常含 6–10 μg 基因组 DNA;本试剂盒回收率约 50–70%,因此典型得率为 3–7 μg DNA。儿童或淋巴减少症患者得率会偏低。如需更高得率,建议增加起始量或先富集白细胞层。

本试剂盒可以处理哪些类型的血液样品?

本试剂盒兼容新鲜全血、抗凝全血(EDTA / 柠檬酸 ,肝素抗凝血需先用肝素酶处理或更换抗凝管)、冷冻全血、白细胞悬液与去红细胞后的白细胞层(buffy coat)。推荐起始量 200 μL 全血,过载会降低得率。Wright 染色血膜或干血斑(DBS)需要专用试剂盒。

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产品介绍

本试剂盒适用于哺乳动物血液核酸提取,不含苯酚等有毒化学试剂组分,采用独特的缓冲液配方Buffer IRB最大限度去除血液抑制剂的影响,同时应用先进的硅胶膜吸附技术,操作简单、快速。得到的DNA 比传统试剂盒纯度更高,可直接用于酶切、转化、测序及PCR 等分子生物学实验。


存储条件

本产品除Proteinase K溶液和RNase溶液外,其余试剂可在室温(15-25℃)保存12个月。低温下Buffer BL或Buffer IRB可能会有沉淀形成,使用时需55℃水浴让沉淀完全溶解。Proteinase K溶液和RNase A溶液冰袋运输,收到产品后请分装保存于-20℃。


需要额外准备的材料

□ 无水乙醇(96%-100%)

□ 无菌1.5/2mL离心管


开始前注意事项 务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项

● Buffer BL和Buffer IRB是如有混浊现象,可在55℃水浴中加热几分钟,即可恢复澄清。

● 基因组提取所有步骤都在室温(15-25°C)下进行。

● 样本要求:本试剂盒首选EDTA抗凝血(通常为紫色盖真空管)。亦可使用柠檬酸钠(ACD/枸橼酸钠)抗凝血。严禁或不建议使用肝素抗凝血(通常为绿色盖真空管),因为残留的肝素会严重抑制下游PCR扩增及酶促反应。


开始前试剂准备

□ 按瓶子标签所示,Buffer IRB及Buffer BW中加入指定体积的无水乙醇稀释,于室温密封保存。


DNA浓度及纯度检测

回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测纯度与浓度。

DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。

OD260/OD280比值应为1.7-2.0,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用ddH2O,比值会略低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。


应用领域

适合于从约10μL-1mL抗凝血液、血清、血浆、尿液、或其它体液样品中直接提取总DNA。获得的DNA包括了基因组 DNA(如淋巴细胞、线粒体DNA、游离的DNA(>100bp)、以及病毒DNA(如乙肝)等;


操作步骤:

1. 转移250μL抗凝的血液,血清,血浆或其它体液样品至蛋白酶的离心管中。轻轻振荡混匀。若血液小于250μL,用PBS或Buffer ATE调整总体积至250μL
注意:首选EDTA抗凝血。亦可使用柠檬酸钠抗凝。不建议使用肝素抗凝,残留的肝素会严重抑制下游PCR反应。

2. 加入15 μL Proteinase K溶液,最高速度涡旋混匀5秒。

注意:Proteinase K溶液不能与Buffer BL先混合。

3. 加入250μL Buffer BL至样品中。立即颠倒3-5次混匀,最高速度涡旋混匀15-20秒。后56℃水浴15分钟,其间涡旋混匀2-3次。

注意:涡旋时须让裂解液与血液充分混匀才能保证裂解效果。水浴结束后,简短离心以收集管盖及管壁的水滴。

4. (可选步骤)若需去除RNA,加入10μL RNase A Solution至裂解液中,室温静置 10分钟。

5. 加入250μL无水乙醇至裂解样品中,盖上盖子,快速颠倒3-5次,涡旋混匀30秒。

6. 把DNA结合柱装在2mL收集管中。转移混合液至柱子中,并以10,000×g离心1分钟。

7. 倒弃流出液,把柱子重新装回收集管中。加入500μL Buffer IRB(请先检查是否已加入无水乙醇)至柱子上并以10,000×g离心1分钟。

8. 倒弃流出液,把柱子重新装回收集管中。加入500μL Buffer BW(请先检查是否已加入无水乙醇)至柱子中,10,000×g离心1分钟。

9. 重复操作步骤8一次。

10. 倒弃流出液,把柱子重新装回收集管中。12,000×g离心空柱2分钟,以甩干柱子的乙醇残留。将吸附柱移入新的1.5 mL离心管,室温开盖晾干5-10 min。

注意:漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验,务必执行晾干步骤,并确保吸附柱中无肉眼可见的残留液体。

11. 向膜中央悬空滴加30-100μL Buffer ATE,室温静置2分钟后以12,000×g离心2分钟收集离心下的基因组DNA。

Buffer ATE在55-60℃预热后加入膜中央洗脱可提高核酸获得率。静置时间有利于大分子基因组DNA释放

12. 弃去柱子,将基因组DNA溶液于-20℃保存(短期可保存2-8℃)或进行下游实验。

附加方案处理 0.25-1mL 的血液DNA抽提 (注:该方案需要另外订购 Buffer RBC)

① 转移0.25-1mL抗凝血液样品至2-15mL 离心管中。

② 加入2.5倍体积 Buffer RBC至样品中,颠倒混匀5-10次并静置3分钟。

③ 2,000×g离心5分钟。小心倒弃上清液,并反扣于吸水纸上吸尽残液。(注:倒弃上清液时,小心不要倒弃细胞核沉淀。)

④ 加入250μL灭菌水和25μL蛋白酶 K溶液到样品中。涡旋30秒打散沉淀团。

⑤ 按前述第3步加入Buffer BL开始进行操作。


常见问题

1.  柱子堵塞

 样品裂解不充分: 样品与Buffer BL混匀不充分。重新提取,加入Buffer BL后先颠倒混匀3-5次,然后以最高速度涡旋让样品与Buffer BL充分混匀。

 Proteinase K活性下降: 重新制备Proteinase K。使用后Proteinase K必须保存于-20℃。Proteinase K与Buffer BL不能预先混合。

 样品含凝血块: 处理陈旧的血液样品时,加大蛋白酶的用量,或用附加方案进行提取。

 样品含固体颗粒:在第5步加入乙醇前,10,000×g离心3分钟去除未消化的杂质,转移上清液至新的离心管后再加入乙醇。

 样品用量太多: 白膜层、浓缩血液、细胞悬液中含在大量的细胞,减少样品量。

2.  DNA纯度不达标

 血液样品中存在凝血块: 加大蛋白酶K的用量,消化过程中用移液枪吸打几次打散凝块。或通过离心去除。处理凝血较多的样品时,需用匀浆器充分匀浆凝块。

 样品裂解不充分: 样品与Buffer BL混匀不充分。重新提取加入Buffer BL后延长混匀及涡旋时间

3.  DNA产量低

 血浆或血清等无细胞体液样品,其DNA含量低,通常只有ng级。

 第5步加入乙醇后混匀不充分或乙醇加入的体积不够。

 洗脱不充分: 洗脱液需加到膜中央,可增加洗脱体积或次数。

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