产品介绍
本试剂盒采用可高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统,适用于从PCR产物、限制性内切酶体系、或其他酶促反应液中回收100bp-10kb的DNA片段,回收率可达90%以上,每个吸附柱每次可吸附的DNA量为20µg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作,包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。本产品仅供科研使用,请勿用于医药、临床治疗、食品及化妆品等用途。
存储条件
该试剂盒置于室温(15-25℃)干燥条件下,可保存12个月,更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下,Buffer PB可能产生沉淀,使用前可在37℃水浴中预热10 min至沉淀溶解。
需要额外准备的材料
□ 无水乙醇(96%-100%)
□ 无菌1.5mL离心管
开始前注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。
□ 本试剂盒为无选择性的回收溶液内所有DNA片段,如需回收特定片段,同时去除其他不同大小的片段,请选择琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒。
□ 回收<100bp或>10kb的DNA片段时,应加大Buffer PB的体积,延长吸附和洗脱时间。
□ 回收率与初始DNA量和洗脱体积有关,初始量越少、洗脱体积越少,回收率越低。
□ 高温及潮湿等不利环境因素对吸附柱产生影响,请将吸附柱储存于阴凉干燥的环境中。
开始前试剂准备
□ 按瓶子标签所示,加入4倍体积的无水乙醇稀释Buffer PW,于室温密封保存。
□ 确认Buffer PB溶液显示为黄色。
DNA浓度及纯度检测:
回收得到的DNA片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。
DNA应在OD260处有显著吸收峰,OD260值为1相当于大约50μg/mL双链DNA、40μg/mL单链DNA。
OD260/OD280比值应为1.7-2.0,如果洗脱时不使用洗脱缓冲液,而使用ddH2O比值会偏低,因为pH值和离子存在会影响光吸收值,但并不表示纯度低。
操作步骤:
1. 将5倍体积的Buffer PB添加到1倍体积的PCR样品中,然后混匀。
例如,将500µL Buffer PB添加到100µL PCR样品(不包括油的体积),无需去除石蜡油或矿物油。
2. Buffer PB与样品充分混匀后,检查颜色是否为黄色。
如果混合物的颜色为橙色或紫色,则逐滴加入10-30µL 3 M 醋酸钠(pH 5.2)并混合,直到混合物颜色变成黄色。DNA吸附到膜上仅在pH ≤ 7.5时有效。Buffer PB含有一种pH指示剂,在pH ≤7.5时为黄色,在较高pH时为橙色或紫色,可通过颜色轻松确定DNA结合的最佳pH。
3. 将吸附柱套在2mL收集管中,并将上一步得到的溶液加入到吸附柱中,≥8000×g (≥10,000 rpm)离心30s,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
吸附柱最大容量为700µL,若样品体积大于700µL,可分批加入。
4. 向吸附柱中加入500µL Buffer PW(已加入无水乙醇),≥8000×g (≥10,000 rpm)离心30s,倒掉收集管中的废液,将吸附柱放回收集管中。
注意:如果回收的DNA是用于盐敏感的实验,例如平末端连接实验或直接测序,建议加入Buffer PW后静置2-5min后再离心。
5. 重复操作步骤4一次。
6. 倒掉收集管中的废液后将吸附柱再次套入收集管中,最大转速 (~13,400×g)离心2min以干燥吸附柱膜,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。将吸附柱套入新的1.5mL离心管中并于室温开盖放置5-10min彻底晾干。
注意:Buffer PW中的乙醇残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。
7. 向吸附柱膜中央位置悬空滴加30-50µL Buffer EB,盖上盖子室温静置2min后,最大转速 (~13,400×g)离心2min收集DNA溶液并置于-20℃保存。
注意:洗脱体积不应小于30µL,体积过少影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响。若后续做测序,需使用ddH2O做洗脱液,并保证其pH值在7.0-8.5范围内,pH值低于7.0会降低洗脱效率。为了提高DNA的回收量,若追求更高产量,可用新的 Buffer EB 重复洗脱一次;若追求更高浓度,可将第一次的洗脱液重新加回膜中央再次洗脱。
常见问题:
1. 回收效率低
l Buffer PB加入量不够:正确测量PCR反应液体积,加入足量Buffer PB。
l 洗脱液体积太小:建议用Buffer EB洗脱两次,以获得最高的回收率。洗脱液必须加入柱子的膜中央。洗脱效率取决于洗脱体积和次数。
l 试剂准备有误:Buffer PW没有加入乙醇稀释或体积不准确(乙醇浓度需控制在80%)。
2. 下游应用不理想
盐污染:在加入Buffer PW的步骤中,将Buffer PW加入吸附柱盖上盖子后静置5min再离心。
纯化的DNA还含有引物二聚体:若引物二聚体污染严重,建议改用EK-1101琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒进行切胶纯化。
乙醇污染:洗脱DNA前,打开柱子的盖子,室温晾干5-10min以彻底去除乙醇。若肉眼可见膜上有残留液体,可适当延长干燥时间。
3. A260/230比值低
这是高盐缓冲液残留的现象。可通过增加一次Buffer PW洗涤并在离心前静置2 min来改善。